分子中等

质粒 DNA 提取(碱裂解法)

预计耗时:约 2–3 小时(不含过夜培养)

📌 学习状态

前置知识 / 技能

实验目的

从大肠杆菌中提取质粒 DNA,获得满足下游应用(酶切、测序、转染等)所需纯度和浓度的质粒。

实验原理

在碱性条件(NaOH/SDS)下细胞裂解,基因组 DNA 与质粒 DNA 均发生变性;加入酸性醋酸钾中和后,超螺旋质粒 DNA 能快速复性并保持溶解,而基因组 DNA 与蛋白质因分子量大、结构复杂而变性沉淀,随细胞碎片被离心去除,上清中富集质粒 DNA,再经乙醇沉淀或吸附柱纯化得到产物。

实验步骤

  1. 1培养

    挑取含目的质粒的单菌落,接种到含抗生素的 LB 培养基,37℃ 摇床过夜培养。

  2. 2收集菌体

    分次离心收集菌液(如 12000 rpm,1 min),弃上清。

  3. 3重悬

    加入溶液 I(含 RNase A)充分重悬菌体。

  4. 4裂解

    加入溶液 II(NaOH/SDS),轻柔颠倒混匀,静置至液体变澄清黏稠。

    ⚠ 裂解时间不宜过长,避免质粒被破坏。

  5. 5中和

    加入预冷溶液 III,轻柔颠倒混匀,冰上静置至出现白色絮状沉淀。

  6. 6离心

    高速离心(如 12000 rpm,10 min),取上清。

  7. 7纯化

    上清经吸附柱结合、洗涤,或经异丙醇/乙醇沉淀。

  8. 8洗脱

    用 TE 缓冲液或洗脱缓冲液洗脱质粒 DNA。

  9. 9检测

    用 NanoDrop 测定浓度与纯度(A260/A280)。

所需试剂

  • LB 培养基(含氨苄青霉素)
  • 溶液 I(重悬液,含 RNase A)
  • 溶液 II(NaOH/SDS 裂解液)
  • 溶液 III(醋酸钾中和液)
  • 异丙醇 / 无水乙醇
  • TE 缓冲液 / 洗脱缓冲液

所需仪器

  • 恒温摇床
  • 台式离心机
  • 微量移液器
  • NanoDrop 分光光度计
  • 涡旋振荡器

安全提示

  • ⚠ 含抗生素的培养基和菌液需高压灭菌后处理。
  • ⚠ 溶液 II 含强碱,避免接触皮肤和眼睛。
  • ⚠ 若使用苯酚/氯仿抽提,必须在通风橱中操作并做好防护。
  • ⚠ 操作轻柔,避免基因组 DNA 断裂污染质粒。

预期结果

得到无色透明的质粒 DNA 溶液,A260/A280 约 1.8,浓度满足下游实验要求;电泳可见清晰的超螺旋条带。

结果分析

✅ 正常结果

得到无色透明的质粒 DNA 溶液,A260/A280 在 1.8–2.0 之间;琼脂糖凝胶电泳可见以超螺旋构象为主(可能含少量开环/线性),无基因组 DNA 和 RNA 污染。

解读:说明菌体裂解充分、质粒完整、RNA 和蛋白质去除干净,纯度和浓度满足酶切、测序、转染等下游应用。

⚠️ 异常结果

  • 1质粒产量低(浓度低)

    原因:菌体量不足、质粒拷贝数低、裂解不充分、洗脱不完全或洗脱液 pH 不当。

  • 2基因组 DNA 污染(电泳上方出现大分子量条带)

    原因:裂解时间过长、颠倒混匀过于剧烈导致基因组 DNA 断裂混入。

  • 3RNA 污染(电泳下方出现弥散条带)

    原因:RNase A 失效或用量不足、溶液 I 未充分混匀。

  • 4蛋白污染(A260/A280 明显低于 1.8)

    原因:中和后离心不彻底、沉淀或吸附柱洗涤不充分、苯酚残留。

  • 5缺少超螺旋条带(大量开环/线性)

    原因:操作中涡旋过于剧烈或反复冻融导致机械剪切、试剂 pH 不当或过期。

关联实验

实验前检查清单

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🧪 试剂

📦 耗材

🔬 仪器

🛡 安全提示