蛋白中等

SDS-PAGE 蛋白电泳

预计耗时:约 4 小时

📌 学习状态

前置知识 / 技能

实验目的

用 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳按分子量分离蛋白质,用于蛋白纯度鉴定、表达检测与分子量估算。

实验原理

SDS 使蛋白变性并带上均匀负电荷,消除原有电荷差异;蛋白在聚丙烯酰胺凝胶中按分子量大小分离,经染色后显示条带。

实验步骤

  1. 1制胶

    配制分离胶与浓缩胶,灌入玻璃板并插梳子待凝固。

  2. 2样品处理

    蛋白样品加 loading buffer,95–100℃ 变性 5 min。

  3. 3上样

    组装电泳槽,加入电泳缓冲液,上样并加蛋白 Marker。

  4. 4电泳

    先低压(80 V)跑浓缩胶,再高压(120 V)跑分离胶。

  5. 5染色

    取下凝胶,用考马斯亮蓝染色。

  6. 6脱色

    脱色液脱色至条带清晰,拍照分析。

所需试剂

  • 30% 丙烯酰胺
  • SDS
  • TEMED
  • 过硫酸铵(APS)
  • 电泳缓冲液(Tris-甘氨酸)
  • 考马斯亮蓝染液
  • 蛋白 Marker
  • loading buffer

所需仪器

  • 垂直电泳槽
  • 电泳仪
  • 微量移液器
  • 脱色摇床
  • 凝胶成像系统

安全提示

  • ⚠ 丙烯酰胺未聚合时有神经毒性,戴手套操作。
  • ⚠ TEMED 有刺激性气味,通风处使用。
  • ⚠ 电泳时注意高压安全,勿触碰电极。

预期结果

蛋白条带清晰、分离良好,Marker 分子量梯度正常,目的蛋白在预期位置。

结果分析

✅ 正常结果

条带清晰锐利、无拖尾,Marker 各分子量条带分离正常,目的蛋白条带位置符合预期分子量。

解读:说明凝胶制备良好、电泳条件合适、样品处理正确,可用于纯度判断与分子量估算。

⚠️ 异常结果

  • 1条带模糊拖尾

    原因:蛋白上样量过多、电压过高、凝胶聚合不均。

  • 2无条带或极弱

    原因:上样量不足、蛋白降解、染色液失效。

  • 3条带弯曲(微笑/皱眉形)

    原因:凝胶聚合不均、边缘效应、上样量不均。

  • 4蛋白条带出现竖纹

    原因:样品含盐或核酸、未充分变性。

关联实验

实验前检查清单

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🧪 试剂

📦 耗材

🔬 仪器

🛡 安全提示

常见问题排查(Troubleshooting)

1条带模糊拖尾

可能原因

  • 上样量过多
  • 电压过高
  • 凝胶聚合不均

解决办法

  • 减少上样量
  • 降低电泳电压
  • 重新配制凝胶
2无条带或极弱

可能原因

  • 上样量不足
  • 蛋白降解
  • 染色液失效

解决办法

  • 增加上样量
  • 加蛋白酶抑制剂
  • 更换染色液
3条带弯曲(微笑形)

可能原因

  • 凝胶聚合不均
  • 边缘效应
  • 上样量不均

解决办法

  • 充分混匀制胶
  • 减少边缘孔上样
  • 保证各孔上样一致